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糖尿病足腐肉的处理

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  糖尿病足伤口常表现为覆盖有腐肉的慢性溃疡,其腐肉的成分构成和成因、以及管理策略是本文要讨论的话题。

  主要观点:

  1. 腐肉在糖足中发挥着各种有害作用,必须将其清除;

  2. 伤口冲洗、清创垫(Cleansing pad)、或敷料等可用于腐肉的清除;

  3. 通过一次或序列清洁与清创,使伤口恢复健康的急性状态,能为愈合创造最佳条件。

  腐肉是覆盖在伤口表面的潮湿的失活组织,依含水量等的不同,其颜色可呈现为乳白色、黄色或棕褐色,可以紧密或疏松的附着于伤口床,可表现为粘液状、胶状、粘稠丝状、或纤维蛋白状,常包含纤维蛋白、蛋白物质、白细胞、细菌、浆液渗出等。糖尿病足伤口常有腐肉的存在(图1),紧密或疏松附着。在伤口床存在的时间越久,腐肉越厚、且难以去除(Black et al, 2010)。

  

  腐肉的存在有多种危害,例如会延迟伤口愈合和肉芽组织生长、妨碍检查伤口的深度和范围、病原微生物的储存库、异味的来源。医务人员须重视其存在,积极寻求方法将其取出,以利于伤口愈合。

  腐肉与感染

  腐肉在伤口床的生成、表现和再生被认为与细菌活性有关(Harding and Enoch, 2003)。腐肉的成分决定了它是病原微生物的良好培养基,导致其成为感染的来源,不断威胁患者的肢体;及异味的来源而困扰患者。

  腐肉可呈现多种颜色,白色表明细菌负荷低,而黄色或绿色表明细菌负荷较高。腐肉也可以表现为棕褐色,显示有血红蛋白的存在。临床中要注意不要将腐肉与正常的解剖组织混淆,例如肌腱和韧带,这些组织在伤口床也呈现黄色,因此易于腐肉混淆(Black et al, 2010)。

  腐肉的不断重现可能与生物膜有关(Davis et al, 2006)。腐肉被成功清除后快速重现表明可能存在生物膜。

  腐肉与糖尿病足

  糖尿病患者一生中发生足溃疡的风险高达25%Boulton, 2008),而这些伤口需要专业的治疗。清洁和清创是多种伤口管理中的重要环节(Strohal, 2013),尤其是糖尿病足(Levin, 2002)。实施前须对患者和伤口进行全面调查和评估,以便选择最适合的方法。如果希望了解糖尿病足的全面评估可以参见“Guide to the assessent and management of Diabetic foot wounds”McInnes 2001),关于清创方法的系统描述可以参见“Effective debridement in a changing NHS”Wounds UK, 2013)。这些论述中作者对糖尿病足溃疡中腐肉的管理均作了重点描述。

  腐肉的管理

  腐肉的危害决定了在糖足治疗中,必须将其清除。

  *锐器清创

  尽管外科或锐器清创能快速清除伤口坏死组织,但其在临床中并非总是实际或最适合的方法(Thomas, 1997),这些方法只能由受过专业培训的医师完成(如医生、专科足病师、足外科医生)、而新手或护士则无法采用。

  除锐器清创外,还有多种技术可供选择而无需大量培训,例如伤口冲洗(清洗液)或清创垫(Debrisoft),或使用敷料(如水凝胶片、蜂蜜或卡地姆碘)。

  *伤口清洗

  少量的疏松附着的腐肉可以简单地通过清洗而去除,可以使用自来水、无菌水或生理盐水。使用不同清洗液的合理性和优劣仍然存有争论,临床医务人员应对感染的风险和不同产品的效价比进行评估(Watret and McClean, 2009

  次氯酸钠和过氧化氢也可用于去除伤口碎屑,但目前被认为对伤口愈合有负面效应,尤其是对于新生脆弱组织,不推荐使用了。市场上还有专门的伤口清洗液出售,使用最广泛的是Prontosan,有液体和凝胶两种剂型,主要成分是PHMB(抗菌剂)和甜菜碱(表面活性剂)。这一产品可以用于感染风险较高的伤口,去除碎屑和污染物,降低生物负荷,破坏生物膜。

  *机械清创

  非选择性,使用机械力清除伤口失活组织和碎屑。常用方法包括湿到干敷料、高压冲洗、超声、及局部负压。尽管容易开展,作用快速,但传统的机械清创能损伤健康的肉芽组织(Enoch and Harding, 2003)。其他的清创产品包括Debrisoft,一次性使用的清创敷料,含有单丝聚酯纤维,可以简单安全地去除组织碎屑和失活组织而不损伤健康组织(Haycocks and Chadwick, 2012)。

  *蛆虫清创

  使用医疗级的无菌蝇蛆去除伤口坏死组织或腐肉。这是一种古老的方法,历史上被军医(Steenvoorde, 2007)和古代中国人使用(Chan et al, 2007)。治疗用的蛆虫在实验室里培养,并消毒以确保人体使用的安全。在蛆虫的分泌物中已经发现三种蛋白分解酶,可以有效降解细胞外基质(Chambers, 2003)。

  我们的研究(Sherman, 2003)发现传统方法治疗5周后,伤口33%仍然被坏死组织覆盖,而生物清创在4周后即使伤口完全清创。近期一项荟萃分析发现(Tian, 2013),四项比较蛆虫清创和传统治疗的研究,共涉及356名糖足溃疡患者,结果显示蛆虫治疗组在愈合率(P=0.03)、截肢率(P=0.02)、愈合时间(P=0.0004)上显著优于对照组。作者认为蛆虫治疗在糖尿病足溃疡治疗方面是有效的,但仍需要更多研究来确立其在临床常规使用的地位。

  敷料在腐肉管理中的应用

  自溶性清创是一种自然过程,通过人体自身的酶来软化和液化失活组织,是人体去除腐肉的关键过程。敷料的使用是辅助自溶性清创的常用且简单的方法,很多敷料可以满足这一目的。

  *水凝胶

  片状水凝胶可以有效促进伤口的自溶性清创,但使用时须谨慎以避免发生浸渍,这类产品会增加伤口周围的渗液。但各家公司产品的含水量和渗液吸收能力不同,使用时个人经验比较重要。

  市场上还有大量的无定形水凝胶,例如Intrasite Gel, Hydrosorb Gel, Purilon Gel, Askina Gel, Cutimed Gel, NU-Gel, GranuGEL等。对于渗出少而干燥的伤口有非常好的作用。

  *水胶体

  表浅、渗出少的腐肉伤口,可以使用水胶体敷料,可以有效促进伤口的自溶性清创。

  *藻酸盐

  渗出较多的腐肉伤口可以用藻酸盐敷料,例如Sorbsan, Sorbalgon, Kaltostat,藻酸盐敷料吸收渗液后转变为凝胶状,可以有效保持湿性环境,促进自溶性清创。此外,也可以用其他成胶的多聚糖类敷料,例如Aquacel

  为了创造最佳的伤口愈合环境,必须清创去除失活组织。使用何种方法有赖于医务人员接受的教育培训和经验,但应该基于伤口类型和患者需要。无论选择何种方法,均不应忽视腐肉,腐肉的存在表明伤口床处于不健康的状态。通过单次或多次序贯性的清洗和清创,将慢性伤口转变为健康的急性状态可以为愈合创造最佳机会。

  原文:Diabetic Foot Canada Vol 3 No 2 2015

  参考文献:

  • Black J, Baharestani M, Black S et al (2010) An overview of tissue types in pressure ulcers: a consensus panel recommendation. Ostomy Wound Manage 56: 28–44

  • Boulton AJ, Armstrong DG, Albert SF et al (2008) Comprehensive foot examination and risk assessment. A report of the Task Force of the Foot Care Interest Group of

  • the American Diabetes Association, with endorsement by the American Association of Clinical Endocrinologists. PhysTher 88: 1436–43

  • Chambers L, Woodrow S, Brown AP et al (2003) Degradation of extracellular matrix components by defined proteinases from the greenbottle larva Lucilia sericata used for the

  • clinical debridement of non-healing wounds. Br J Dermatol 148: 14–23

  • Davis SC, Martinez L, Kirsner R (2006) The diabetic foot: the importance of biofilms and wound bed preparation. Curr Diab Rep 6: 439–45

  • Enoch S, Harding K (2003) Wound Bed Preparation: The Science Behind the Removal of Barriers to Healing. Wounds 15: 1–14

  • Haycocks S, Chadwick P (2012) Debridement of diabetic foot wounds. Nurs Stand 26: 51–6

  • Levin ME (2002) Management of the diabetic foot: preventing amputation. South Med J 95: 10–20

  • McInnes A (2001) Guide to the assessment and management of diabetic foot wounds. Diabetic Foot 4(Suppl): 1–6

  • Sherman RA (2003) Maggot therapy for treating diabetic foot ulcers unresponsive to conventional therapy. Diabetes Care 26: 446–51

  • Steenvoorde P1, Jacobi CE, Van Doorn L, Oskam J (2007) Maggot debridement therapy of infected ulcers: patient and wound factors influencing outcome - a study on 101 patients with 117 wounds. Ann R Coll Surg Engl 89: 596–602

  • Strohal R, Apelqvist J, Dissemond J et al (2013) EWMA document: debridement. J Wound Care 22(Suppl 1): S1–52

  • Tian X, Liang XM, Song GM et al (2013) Maggot debridement therapy for the treatment of diabetic foot ulcers: a metaanalysis. J Wound Care 22: 462–9

  • Thomas S (1997) A structured approach to the selection of dressings. Available at: https://bit.ly/Pa18Qh (accessed 18.03.2014)

  • Watret L, McClean A (2009) Cleansing diabetic foot wounds: Tap water or saline? The Diabetic Foot Journal 12: 134–8

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